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通過全基因組Bisulfite測序技術(shù)研究羊卵巢DNA甲基化與生產(chǎn)力之間的關(guān)系 雜志:BMC Genomics 影響因子:3.729 PMID:28969601 ? 背景 DNA甲基化是一種表觀遺傳學(xué)的調(diào)控機(jī)制,在生物學(xué)調(diào)控過程中起著重要的作用,比如基因表達(dá)、基因印記、細(xì)胞分化和胚胎發(fā)生以及決定生物的表型和可塑性。甲基化發(fā)生在胞嘧啶殘基的CpG核苷酸上。目前,哺乳動(dòng)物中,通過高通量測序進(jìn)行全基因組甲基化探索重要的生物學(xué)功能的技術(shù)被廣泛應(yīng)用。對(duì)農(nóng)戶而言,羊的生產(chǎn)效率以及產(chǎn)仔次數(shù)是重要的經(jīng)濟(jì)回報(bào)指標(biāo)。通常情況下,生殖性狀的遺傳性在中等及以下,并且對(duì)表型選擇的效果并不顯著。因此,研究生殖能力相關(guān)的基因信息可以提高選擇效率。繁殖能力由卵巢濾泡調(diào)控,該過程被精確的增殖和分化事件調(diào)控。近期的研究主要集中在DNA甲基化如何調(diào)控卵巢的形成和生殖系統(tǒng)發(fā)育上。一些證據(jù)表明,卵巢的發(fā)育受DNA甲基化的調(diào)控。通過對(duì)豬的卵巢甲基化分析發(fā)現(xiàn),在豬的性別和卵巢發(fā)育成熟過程中存在甲基化的改變。在山羊下丘腦甲基化研究中也存在類似的結(jié)果。盡管有這些發(fā)現(xiàn),但是想弄清楚DNA甲基化模式與生產(chǎn)力之間的關(guān)系仍然有局限。湖羊被公認(rèn)為生殖系統(tǒng)成熟早且生產(chǎn)能力強(qiáng),然而,最近幾年的研究中,更多的注意力集中在肉質(zhì)上,選擇過程中關(guān)注生殖特征的研究相對(duì)較少。繁殖是一個(gè)復(fù)雜的過程,例如產(chǎn)仔數(shù)量這一特征受許多微效基因和一些主要基因的影響。所以了解DNA甲基化在基因功能中的作用非常必要。該研究中選用WGBS的技術(shù)對(duì)湖羊甲基化進(jìn)行研究,系統(tǒng)的分析了DNA甲基化模式與產(chǎn)仔數(shù)量的潛在關(guān)系。另外,此項(xiàng)研究也可以增加對(duì)湖羊甲基化的認(rèn)知和了解。 材料和方法 實(shí)驗(yàn)材料:共選取6只湖羊(Hu sheep ),年齡3歲,非妊娠母羊,分為兩組: HP組(高生產(chǎn)力組):3只湖羊,有3次產(chǎn)仔記錄(n=3,litter size=3) LP組(低生產(chǎn)力組):3只湖羊,有1次產(chǎn)仔記錄(n=3,litter size=1) 分別將處于發(fā)情期的母羊在12小時(shí)內(nèi)進(jìn)行屠殺,收集身體同側(cè)的卵巢,迅速用液氮冷凍, -80?°C儲(chǔ)存,分別提取DNA和RNA,DNA進(jìn)行bisulfite處理。 測序平臺(tái):北京百邁客生物科技有限公司 IlluminaHiSeq 2500平臺(tái),兩組分別選取3個(gè)樣本進(jìn)行WGBS測序,兩組總RNA進(jìn)行轉(zhuǎn)錄組測序 分析平臺(tái):所有數(shù)據(jù)在百邁客云平臺(tái)(BMKCloud)進(jìn)行分析,分析內(nèi)容如下: 1.參考基因組比對(duì) 測序片段在進(jìn)行甲基化分析之前需要與參考基因組比對(duì),通過bisulfite處理和PCR擴(kuò)增將未甲基化的胞嘧啶(C)轉(zhuǎn)換成胸腺嘧啶(T)。應(yīng)用Bismark 軟件將bisulfite處理的片段與參考基因組(Oar_v3.1)比對(duì),其他數(shù)值均選用百邁客云平臺(tái)的默認(rèn)參數(shù)。用該軟件進(jìn)行測序深度和覆蓋度的統(tǒng)計(jì),以及bisulfite轉(zhuǎn)化率統(tǒng)計(jì),甲基化類型確定。Bismark 軟件不能辨別單個(gè)胞嘧啶位點(diǎn),參數(shù)設(shè)置為coverage ≥ 4×,F(xiàn)DR< 0.05。 2.評(píng)估甲基化水平以及鑒定DMRs 使用MOABS軟件對(duì)覆蓋度大于10X的胞嘧啶位點(diǎn)進(jìn)行DMRs(差異甲基化區(qū)域)分析,運(yùn)用如下公式: 3.DMGs(差異甲基化基因)生物信息分析 將DMGs與GO,COG,KEGG數(shù)據(jù)庫進(jìn)行比對(duì)分析這些基因的功能,進(jìn)行GO富集分析,以及應(yīng)用KOBAS軟件對(duì)KEGG通路中顯著富集的差異表達(dá)基因進(jìn)行檢測。并且利用String數(shù)據(jù)庫對(duì)選取的DMGs進(jìn)行互作網(wǎng)絡(luò)分析。 結(jié)果 1.DNMTs表達(dá)水平 首先用qRT-PCR的方法分別對(duì)HP組和LP組卵巢中DNMTs(DNMT1, DNMT3A和?DNMT3B)表達(dá)水平進(jìn)行了分析,發(fā)現(xiàn)HP組中DNMT1和?DNMT3A的表達(dá)水平顯著低于LP組(P < 0.05)。 圖1.?HP組和LP組卵巢DNMTs的表達(dá)水平分析 2.DNA甲基化比對(duì)以及甲基化模式分析 HP組和LP組每個(gè)樣平均產(chǎn)生的clean數(shù)據(jù)分別是63.59G和66.72G。比對(duì)率在71.36%-74.68%之間。平均每個(gè)組中胞嘧啶位點(diǎn)的甲基化率在3.5%左右。 表1.全基因甲基化測序結(jié)果 該研究中發(fā)現(xiàn)了3種甲基化的模式:CG,CHG(H 表示?A,C或?T), 和?CHH,這些類型在HP和LP兩個(gè)組的比例是非常相似的。HP組中:89.78% CG,?2.46% CHG,?7.76% CHH;LP組中:88.60% CG,2.66% CHG,8.74% CHH。 圖2.甲基化模式分析 3.甲基化序列偏好性分析 通過小提琴作圖分析,圖中不同的點(diǎn)代表不同的甲基化水平,且通過橫截面積可以看出CG甲基化類型的數(shù)量較多,而CHG和CHH甲基化類型的數(shù)量較低。通過各樣本染色體甲基化圖譜的分析發(fā)現(xiàn),染色體中大多數(shù)超甲基化胞嘧啶是CG類型的,并且不同組中染色體上的胞嘧啶甲基化位點(diǎn)有差異,如18號(hào)染色體。另外,研究者還分析了sequence context和甲基化偏好性之間的關(guān)系,統(tǒng)計(jì)了所有可能的9個(gè)堿基序列甲基化百分比,mC位點(diǎn)處于超甲基化狀態(tài)中,CAG是CHG甲基化位點(diǎn)中絕大多數(shù)共同序列motif,并且兩個(gè)組中CHH contexts的頻率不一樣。 圖3.各樣本甲基化分布小提琴圖 4.不同功能區(qū)域DNA甲基化水平 研究者將所有的mC分為啟動(dòng)子、5 ’UTR、外顯子、內(nèi)含子、3 ’UTR這幾個(gè)基因功能區(qū)域,通過這些功能區(qū)域?qū)谆竭M(jìn)行評(píng)估。兩組中,各區(qū)域表現(xiàn)出相似的甲基化水平,并且CG類型的甲基化水平高于CHG和CHH類型。mC的大部分位點(diǎn)發(fā)生在內(nèi)含子、外顯子(第一個(gè)外顯子除外)及下游區(qū)域。此外,在第一個(gè)外顯子中CG甲基化水平低于除上游區(qū)域以外的其他部分,上游區(qū)域的甲基化水平表現(xiàn)出下降的趨勢,TSS(轉(zhuǎn)錄起始位點(diǎn))附近的CG位點(diǎn)甲基化水平低于首個(gè)外顯子區(qū)域的甲基化水平。另外,在外顯子和內(nèi)含子中檢測到高度甲基化,并且這種甲基化水平從啟動(dòng)子區(qū)到TSS區(qū)逐漸下降,從TSS區(qū)到內(nèi)含子去逐漸增加。CHH類型是低甲基化一類并且在各功能區(qū)域較穩(wěn)定,CHG類型幾乎未甲基化。 圖4.CGI不同功能趨勢圖 5.CGI區(qū)域甲基化注釋 CGI(CG島)區(qū)域功能注釋發(fā)現(xiàn),約68%超甲基化CGI分布在基因間區(qū),1.5%的超甲基化CGI分布在UTR區(qū),在兩個(gè)組中沒有顯著差異(P > 0.05)。 圖5. 不同功能部分CGI甲基化分布比例 6.HP組和LP組DMRs分析 檢測兩組DMRs以及根據(jù)不同的甲基化類型進(jìn)行基因功能注釋。共鑒定了70,899個(gè) CG 類型DMRs,?16 個(gè)CHG類型 DMRs以及356個(gè) CHH 類型DMRs。大多數(shù)在基因間區(qū),5 ’ UTR 和?3 ’ UTR分別只有33和162個(gè)DMRs?;谒械募谆愋?,除基因間區(qū)外內(nèi)含子中DMRs的比例最高。研究人員還對(duì)兩組DMRs進(jìn)行了熱圖聚類分析。 圖6.不同基因功能區(qū)不同甲基化模式中DMRs比例 7.測序結(jié)果驗(yàn)證 為了驗(yàn)證測序結(jié)果,從測序結(jié)果中隨機(jī)選取10個(gè)DMGs進(jìn)行qRT-PCR實(shí)驗(yàn),結(jié)果顯示HP組中GPNMB,ELK4,?BACH1,?CDIPT表達(dá)水平顯著低于LP組,而SCYL1表達(dá)水平顯著高于LP組(P < 0.05),兩組中?ABCG2,mTOR,STK3,?ACVR1...

題目:mRNA-miRNA整合分析揭示BR、auxin信號(hào)通路參與調(diào)控油菜分蘗(分枝)角度 發(fā)表雜志:Int J Mol Sci ?影響因子:3.226 研究背景 油菜是全球范圍內(nèi)非常重要的一種油料作物,隨著人口的增加與可用耕地面積的減少,最大限度提高包括油菜在內(nèi)的各類作物的產(chǎn)量成為了育種學(xué)家考慮的一個(gè)重要問題。增大單位土地上的種植密度是一種增加作物產(chǎn)量的策略,每棵植物生長所需的地上面積主要由側(cè)枝的數(shù)量、長度與著枝角度決定,這些因素中,對(duì)側(cè)枝及葉子著枝角度的研究對(duì)于植物的高密度種植策略的應(yīng)用具有重要的意義。 在以往的研究中已經(jīng)發(fā)現(xiàn),水稻中的LAZY1,、TILLER ANGLE CONTROL1、PROSTRATE GROWTH1、 LOOSE PLANT ARCHITECTURE1基因,玉米中的ZmTAC1、ZmLAZY1基因,擬南芥中的 AtLAZY1 、 AtLPA1基因均參與調(diào)控了葉子或側(cè)枝的著枝角度。在代謝物水平,通常認(rèn)為葉或枝的著枝角度與植物生長素( auxin)、油菜內(nèi)脂素(Brassinosteroids,BR)的在組織中的不均勻分布有關(guān)系。 在植物中,一些microRNA也被發(fā)現(xiàn)與auxin調(diào)控網(wǎng)絡(luò)或者分蘗角度相關(guān),比如,miR393通過auxin調(diào)控網(wǎng)絡(luò)影響葉與根的形態(tài)結(jié)構(gòu);miR164可降解轉(zhuǎn)錄因子NAC1轉(zhuǎn)錄本,從而下調(diào)植物對(duì)auxin的響應(yīng)水平,抑制植物側(cè)根的發(fā)育;auxin響應(yīng)基因ARF8、ARF6在大部分物種中被miRNA167調(diào)控;水稻中,過表達(dá)miR160,水稻分蘗角度增大。 目前,油菜中對(duì)分蘗角度的研究還比較少,本研究組之前基于F2群體,使用BSA混池性狀座位定位策略,鑒定到了一個(gè)與auxin合成相關(guān),且可能參與了側(cè)枝著枝角度調(diào)控的基因BnaYUCCA6。 該研究通過對(duì)分枝角度有顯著差異的兩種油菜品系進(jìn)行mRNA與microRNA高通量測序,來進(jìn)一步探討油菜中與分蘗角度相關(guān)的分子調(diào)控機(jī)制。   材料與方法 材料: 油菜品系6098B(較大分枝角度,約52度) 油菜品系Purler(較小分支角度,約22度) 方法: 測序類型:mRNA、microRNA高通量測序 測序平臺(tái):illumina Hiseq 2000測序平臺(tái) 取樣方法:兩個(gè)品系的均取抽薹時(shí)期與花發(fā)育早期兩個(gè)時(shí)間點(diǎn)的分枝發(fā)生部位。每個(gè)品系每個(gè)時(shí)期1個(gè)樣本(每個(gè)個(gè)體至少取5個(gè)分枝發(fā)生部位,最多6個(gè)個(gè)體混樣樣本),總共4個(gè)樣本,每個(gè)樣本分別進(jìn)行mRNA測序與microRNA測序 數(shù)據(jù)分析平臺(tái):百邁云數(shù)據(jù)分析平臺(tái)(http://www.dustyhill.net/) Figure 1 技術(shù)路線 結(jié)果:mRNA測序與分析 a)每個(gè)樣本測序得到~6Gbase 可用數(shù)據(jù),與參考基因組比對(duì)率~80%。 b)差異表達(dá)基因篩選(EBseq,F(xiàn)DR < 0.05 & |FC|>2):如圖2A所示,抽薹期,兩個(gè)品系間檢測得到5908個(gè)差異表達(dá)基因;花發(fā)育早期,兩個(gè)品系間檢測到5397個(gè)差異表達(dá)基因。其中3261個(gè)為兩個(gè)時(shí)間點(diǎn)共有差異表達(dá)基因。 c)對(duì)上述3261個(gè)共有差異表達(dá)基因進(jìn)行GO功能分析,如圖2B所示,差異基因在biological adhesion、biological phase、and locomotion、 macromolecular complex、cell junction、and nucleoid 、nuclear and protein binding transcription factor activity and receptor activity等GO term上有顯著富集。 d)對(duì)兩個(gè)時(shí)間點(diǎn)所有差異基因進(jìn)行KEGG通路分析,其中3297個(gè)基因注釋到了KEGG數(shù)據(jù)庫 ,其中大多數(shù)基因注釋到了 ribosome 、oxidative phosphorylation相關(guān)代謝通路。值得注意的是,在兩個(gè)時(shí)間點(diǎn)分別有58、51個(gè)差異基因注釋到了植物激素信號(hào)通路,進(jìn)一步分析發(fā)現(xiàn),這些通路大多為BR或auxin信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路。該部分結(jié)果如圖3所示。 Figure...

Biochemical and Comparative Transcriptomic?Analyses Identify Candidate Genes Related to?Variegation Formation in Paeonia rockii PMID:?28817092 雜志:Molecules 影響因子:2.861 研究背景:牡丹是木本灌木,芍藥屬牡丹組,是一種重要的傳統(tǒng)觀賞植物,花瓣大而有吸引力。在十個(gè)牡丹野生種中P. rockii(紫斑牡丹)白色花瓣的基部有明顯的黑色彩斑,而P. ostii(鳳丹)沒有花瓣雜色?;ǖ念伾悄档さ囊粋€(gè)重要的商業(yè)特性,花瓣顏色的多樣性可提高牡丹的觀賞價(jià)值,因此闡明P. rockii中紫斑的形成機(jī)制具有重要意義。眾所周知,牡丹的基因很大組(13–16 GB),往往具有較高的雜合度和配子體自交不親和性,在缺少完整的基因組序列的情況下,RNA測序技術(shù)是獲得基因組表達(dá)信息最有效的工具。到目前為止,幾個(gè)花青素生物合成相關(guān)基因在牡丹中已確定,但是色斑形成的分子機(jī)制還不清楚。 材料方法: 取P. rockii (PR),P. ostii?(PO)和PR與PO的雜交F1代(RO),分別收集4月底到五月初5個(gè)不同開放階段的三種牡丹的花瓣進(jìn)行轉(zhuǎn)錄組分析,三個(gè)生物學(xué)重復(fù)。取階段5(完全開放期)的花瓣進(jìn)行形態(tài)解剖分析和色素含量分析。 技術(shù)路線: 實(shí)驗(yàn)結(jié)果: 花瓣顏色測量,形態(tài)解剖分析和色素含量分析 為了確定色斑性狀的遺傳背景,利用PO和PR雜交產(chǎn)生F1植株(RO),所有60株F1植株在花瓣的基部都有色斑存在(Figure 1),PR的彩斑呈顯性遺傳。根據(jù)英國皇家園藝學(xué)會(huì)比色卡(RHSCC),在階段5的PR和RO的背景與PO花瓣一樣為白色,而在第5階段的PR和RO的色斑顏色有差異。PR色斑為深紫色,而RO的為紫紅色。 Figure 1.?Fully open flowers of individuals selected for sequencing. 為了闡明其色斑形成的機(jī)制,作者檢測了色素在PR, PO和RO花瓣中的空間位置。在非色斑花瓣中沒有色素細(xì)胞(Figure 2C,I,L)。相反,色素細(xì)胞主要位于色斑花瓣的上、下表皮和柵欄組織中(Figure 2F,O)。色素細(xì)胞在PR的雜色相應(yīng)也位于表皮內(nèi)(正面),這可能有助于PR色斑更深的顏色(圖左)。在非雜色花瓣中,表皮細(xì)胞是無色的(圖2A,B,G - K)。 Figure 2.?Cellular features of the flower materials. HPLC分析表明,在P. rockii和F1代牡丹花瓣的色素中含有四種花青素(CY3G5G,CY3G,芍藥色素(Pn)3G5G和Pn3G)。PR的色斑顯示出“Cy > Pn”的表型,CY3G是含量最高的花青素(28.36 ±...

金秋開學(xué)迎新季,百邁客微生物送好禮,為感恩長期支持百邁客的各位老師,百邁客微生物產(chǎn)品開學(xué)送好禮,微生物測序數(shù)據(jù)分析雙升級(jí),價(jià)格優(yōu)惠至更低!     活動(dòng)一、微生物多樣性分析平臺(tái)個(gè)性化內(nèi)容升級(jí)至29項(xiàng),深度解讀微生物多樣性數(shù)據(jù),活動(dòng)期間簽單客戶即贈(zèng)多樣性云平臺(tái)一個(gè)月,另99元可再贈(zèng)送一個(gè)月!   活動(dòng)二、宏基因組數(shù)據(jù)升級(jí),價(jià)格更低,全面豐富的宏基因組分析內(nèi)容,基因水平深入挖掘環(huán)境微生物功能信息,助力微生物科學(xué)研究,優(yōu)惠正在進(jìn)行中!   活動(dòng)三、細(xì)菌基因組測序,高深度三代測序,完整的細(xì)菌基因組0Gap組裝,超低優(yōu)惠價(jià)格,活動(dòng)期間簽單即送細(xì)菌完成圖比較基因組分析!   活動(dòng)四、百邁客微生物多樣性信息分析免費(fèi)培訓(xùn)班,加入百邁客多樣性交流平臺(tái)(QQ群439540040)即可免費(fèi)參加定期培訓(xùn),專業(yè)測序分析干貨等你來拿!   更多優(yōu)惠正在進(jìn)行中,詳細(xì)請咨詢當(dāng)?shù)劁N售經(jīng)理...

隨著高通量測序在功能基因組學(xué)領(lǐng)域的廣泛使用,轉(zhuǎn)錄組測序已經(jīng)是常規(guī)的技術(shù)手段之一。通過調(diào)查近幾年高通量測序轉(zhuǎn)錄調(diào)控相關(guān)文獻(xiàn)發(fā)現(xiàn),文獻(xiàn)數(shù)目呈指數(shù)增長,但是絕大多數(shù)發(fā)表的文章水平普遍較低。進(jìn)一步分析發(fā)現(xiàn),大樣本轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)的深入挖掘、結(jié)合非編碼RNA進(jìn)行聯(lián)合分析是高分文章的常用手段。百邁客現(xiàn)推出大樣本(全)轉(zhuǎn)錄組產(chǎn)品系列,目標(biāo)直指轉(zhuǎn)錄調(diào)控高分文章。 1、配套針對(duì)性的實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)和分析方案   2、個(gè)性化項(xiàng)目分析內(nèi)容和數(shù)據(jù)挖掘思路   3、優(yōu)化、美觀、直接用于文章發(fā)表的圖表   4、數(shù)據(jù)分析、文章圖表繪制培訓(xùn)班   5、百邁客云APP個(gè)性化分析至文章發(fā)表   6、結(jié)合公共數(shù)據(jù)進(jìn)行百邁客云分析   7、搭建物種研究方向的轉(zhuǎn)錄調(diào)控?cái)?shù)據(jù)庫   立即體驗(yàn)...

百邁客云平臺(tái)(BMKCloud)自2015年10月正式商用以來已有15000+注冊用戶,運(yùn)用百邁客云平臺(tái)可視化小工具發(fā)表文章數(shù)已超過20余篇。為感恩回饋各位新老用戶對(duì)百邁客云的支持與關(guān)注,百邁客云現(xiàn)推出72款生物信息分析小工具免費(fèi)使用,希望在科研路上助您一臂之力! 72款小工具 ?聚類熱圖、PCA分析、GO/KEGG分類富集圖、lncRNA分類及對(duì)應(yīng)基因注釋、遺傳共線性分析、差異基因GO富集分析、柱狀圖、多平面(縱向)點(diǎn)線圖繪制、miRNA基因家族分類、參考基因組reads統(tǒng)計(jì)分布圖、關(guān)聯(lián)區(qū)域分析、單因素曼哈頓圖、繪圖工具等。 12大功能類別 基因分析、 遺傳進(jìn)化、 ?ncRNA、 質(zhì)控、 組裝 、比對(duì)、 數(shù)據(jù)提取、 突變、 統(tǒng)計(jì)、 表格處理 、繪圖 、序列分析等。 操作指南 ?登錄百邁客云科技官網(wǎng)(http://www.dustyhill.net/)——進(jìn)入注冊用戶界面——填寫注冊信息——注冊成功——領(lǐng)取云豆——使用小工具(您還可以根據(jù)需求多次調(diào)整繪圖、統(tǒng)計(jì)結(jié)果) 云豆輕松get 注冊完成即可獲得200個(gè)云豆,完善個(gè)人信息獲得200個(gè)云豆,邀請好友注冊獲得2000個(gè)云豆,簽到獲得50個(gè)云豆,每日首次登陸獲得3個(gè)云豆,上傳文獻(xiàn)獲得500個(gè)云豆,項(xiàng)目評(píng)價(jià)獲得100個(gè)云豆。 生信科研學(xué)習(xí)平臺(tái) [button size='' style='' text='立即使用' icon='' icon_color='' link='https://international.biocloud.net/zh/software/tools/list' target='_self' color='' hover_color='' border_color='' hover_border_color='' background_color='' hover_background_color='' font_style='' font_weight='' text_align='' margin=''] ...

小RNA和降解組聯(lián)合測序揭示microRNA調(diào)節(jié)茶葉(Camellia sinensis)中兒茶素生物合成 Combined small RNA and degradome?sequencing reveals complex microRNA?regulation of catechin biosynthesis in tea?(Camellia sinensis) ? 雜志:PLOS ONE 影響因子:2.806 PMID:?28225779   研究背景 MicroRNAs是一種內(nèi)源性非編碼小RNA,在動(dòng)植物轉(zhuǎn)錄后調(diào)控及其他生物學(xué)過程中有至關(guān)重要的作用?;趬A基互補(bǔ)配對(duì)機(jī)制,miRNAs主要通過直接切割目標(biāo)mRNA和抑制目標(biāo)基因轉(zhuǎn)錄這兩種方式調(diào)節(jié)目標(biāo)基因的表達(dá)。前期研究表明,miRNA參與多種植物的生長和發(fā)育過程,如:根、葉、花的形態(tài)發(fā)生,信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo),激素反應(yīng)和營養(yǎng)代謝等。植物miRNAs主要通過克隆、生物信息預(yù)測、高通量測序和Northern 雜交的方法來檢測。最常用的技術(shù)是高通量測序,不僅經(jīng)濟(jì)實(shí)惠,而且在低豐度的情況下可以更簡單、快速獲得大量miRNAs。植物中miRNA主要是通過切割目標(biāo)基因或者抑制目標(biāo)基因的表達(dá)進(jìn)行調(diào)控,所以目標(biāo)基因的確定對(duì)miRNA功能的分析至關(guān)重要。miRNAs目標(biāo)基因的預(yù)測可以通過生物信息的方法,目標(biāo)基因的鑒定主要通過降解組測序和5’-RLM-RACE方法(RNA連接酶介導(dǎo)的5'cDNA末端的快速擴(kuò)增),這兩種方式還能鑒定miRNA目標(biāo)基因切割位點(diǎn),有助于miRNA功能分析。 茶樹(Camellia sinensis),富含兒茶素,是風(fēng)靡全球的非酒精飲料之一。兒茶素是茶葉中重要的組成部分,包括脂型兒茶素(如:ECG和EGCG)和非脂型兒茶素(如:EC和EGC)。EGCG是茶葉中含量最豐富的兒茶素并且具有較強(qiáng)的抗癌效果,可以制約癌細(xì)胞的生長,抑制雄激素受體的功能并調(diào)控癌細(xì)胞的生存,血管的生成和移動(dòng)?;谒麄兊姆肿訕?gòu)成,兒茶素可以分為簡單兒茶素和脂型兒茶素。在兒茶素的合成過程中有許多酶的參與,如查耳酮合酶(CHS),查爾酮異構(gòu)酶(CHI),黃烷酮醇4-還原酶(DFR),花青素合酶(ANS),花青素還原酶(ANR)和類黃酮3,5羥基化酶(F3’5’H)。MiRNA被鑒定為轉(zhuǎn)錄和轉(zhuǎn)錄后水平基因表達(dá)的重要調(diào)節(jié)因子,并且裂解目標(biāo)mRNA是植物中基因表達(dá)的主要調(diào)控方式。 在茶樹中,雖然通過高通量測序和芯片技術(shù)發(fā)現(xiàn)了許多保守的以及新的miRNAs,但是miRNAs直接調(diào)控兒茶素生物合成還沒有明確的定義。此項(xiàng)研究中,研究人員通過高通量測序鑒定茶葉中保守的以及新的miRNAs,再通過5’-RLM-RACE方法分析潛在的目標(biāo)miRNAs。通過表達(dá)模式分析進(jìn)一步篩選兒茶素積累過程中潛在的miRNAs。結(jié)合5’-RLM-RACE實(shí)驗(yàn)和表達(dá)模式分析,研究人員發(fā)現(xiàn)了一些新的調(diào)節(jié)兒茶素生物合成途徑中基因切割的調(diào)控因子。 材料和方法 實(shí)驗(yàn)材料 茶樹1005,取葉片(包括芽,第一葉,第二葉,第三葉,第四葉,第五葉,成熟葉),進(jìn)行混合,提取總RNA。 茶樹1005,取葉片(包括第一葉,第三葉,成熟葉),進(jìn)行qRT-PCR表達(dá)分析和兒茶素含量測定。 測序平臺(tái):Illumina?HiSeq 2500?(Biomarker Technology Co.) 技術(shù)路線 實(shí)驗(yàn)結(jié)果 1.茶葉中miRNA的初步分析 從提取的總RNA中構(gòu)建smallRNA文庫,測序質(zhì)控后得到19,567,691條clean reads,與數(shù)據(jù)庫比對(duì)發(fā)現(xiàn)有18.83%的rRNA,1.23%的tRNA,0.01%的small nuclear RNA,0.07%的重復(fù)序列,其中79.85%的序列沒有功能注釋,可以將這些沒有功能注釋的序列用來做下一步的miRNA的預(yù)測和鑒定。根據(jù)smallRNA的測序長度分布圖可以得出,miRNA的長的主要分布在20-25nt之間,豐度最高的是24nt(47.89%)。這個(gè)長度分布和其他栽培茶以及其他植物報(bào)道的結(jié)果非常相似。 2.茶葉中保守miRNAs的鑒定 將沒有功能注釋的clean reads與miRBase(植物已知保守miRNA數(shù)據(jù)庫)進(jìn)行比對(duì),共獲得69個(gè)保守的miRNAs,分別屬于62個(gè)家族。根據(jù)長度分布發(fā)現(xiàn),這些保守的miRNAs的長度主要集中在18-25nt之間,長度主要集中在24nt(46.385),其次是21nt。 對(duì)高通量測序的miRNA片段進(jìn)行分析,鑒定的保守miRNA中,read values低于1000的占91.3%的比例,其中read values低于10的占56.52%的比例。研究人員還發(fā)現(xiàn)了一些高表達(dá)(read values大于1000)的miRNA家族,如miR165a和miR396a。另外,在不同家族中的miRNAs表達(dá)量差異較大,并且在同一家族中各miRNAs之間的表達(dá)量也有較大差異。這些數(shù)據(jù)表明,不同家族miRNA的表達(dá)模式不同,意味著不同的miRNAs在茶樹生長發(fā)育過程中的作用不一樣。 3.茶葉中新miRNAs的鑒定 通過miRDeep2和Mfold軟件分析,共鑒定出47個(gè)新的miRNAs,進(jìn)一步對(duì)這些新miRNA進(jìn)行片段長度和表達(dá)量分析。新miRNA跟保守miRNA長度分布相似,主要集中在18-25nt之間,最集中的長度是24nt和21nt。另外,新miRNA的表達(dá)量比保守miRNA的低,新miRNA中表達(dá)量最高的只有4517個(gè)read values。   研究人員將這些新的miRNA與其他植物中已知的miRNA進(jìn)行比對(duì),揭示了許多同系物。除了三個(gè)miRNA歸為同一個(gè)家族外,絕大多數(shù)的miRNA可以被分為獨(dú)立的家族。研究者還對(duì)新miRNA的前體進(jìn)行了分析,發(fā)現(xiàn)他們都有一個(gè)發(fā)卡環(huán)結(jié)構(gòu),長度在84-114bp。 4.GO功能富集和KEGG通路分析目標(biāo)miRNA 為了研究茶樹miRNA的功能,研究人員運(yùn)用TargetFinder軟件和轉(zhuǎn)錄序列對(duì)上述miRNA進(jìn)行目標(biāo)基因預(yù)測。結(jié)果顯示,其中97個(gè)miRNA對(duì)644個(gè)目標(biāo)基因有調(diào)控作用。再將644個(gè)目標(biāo)基因進(jìn)行GO和KEGG通路富集分析:GO富集分析發(fā)現(xiàn)這些目標(biāo)基因主要富集在細(xì)胞、細(xì)胞器、細(xì)胞膜、連接活性、轉(zhuǎn)運(yùn)活性、新陳代謝和細(xì)胞進(jìn)程等功能條目;KEGG通路富集發(fā)現(xiàn)366個(gè)目標(biāo)基因參與36個(gè)代謝網(wǎng)絡(luò)相關(guān),主要參與糖酵解、檸檬酸循環(huán)、氨基酸代謝、光合作用、脂肪酸代謝、嘌呤嘧啶代謝、氧化磷酸化、植物病原體相互作用、初級(jí)代謝產(chǎn)物和次級(jí)代謝產(chǎn)物過程。 miRNA靶向基因降解組測序和功能分析 為了進(jìn)一步預(yù)測和鑒定miRNA靶向基因,研究團(tuán)隊(duì)構(gòu)建了降解組文庫并進(jìn)行深度測序,結(jié)合轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)和上述獲得的miRNAs,通過TargetFinder軟件預(yù)測到216個(gè)靶向基因被97個(gè)miRNAs調(diào)控。在這些靶向基因中,降解組測序鑒定了26個(gè)基因的26個(gè)切割位點(diǎn),被16個(gè)miRNA家族的19個(gè)miRNAs進(jìn)行轉(zhuǎn)錄后調(diào)控,如表1。 表1.通過降解組測序鑒定茶樹1005中miRNA靶向基因 基于5’-RLM-RACE技術(shù)對(duì)目標(biāo)斷裂位點(diǎn)的驗(yàn)證 研究人員采用5’-RLM-RACE的方法,對(duì)其中5個(gè)有注釋的miRNA(來自降解組測序)切割位點(diǎn)進(jìn)行驗(yàn)證。結(jié)果顯示,目標(biāo)基因comp152929被csn-miR396a1 和?csn-miR396a2共同調(diào)控,切割位點(diǎn)在目標(biāo)基因的第11-12個(gè)核苷酸處;兩個(gè)基因comp159882和comp157894同時(shí)被miRNA167a調(diào)控,且有共同的切割位點(diǎn),在目標(biāo)基因的第11-12個(gè)核苷酸處;另外,miRNA394a調(diào)控comp156493,切割位點(diǎn)有兩處,分別為第10-11,17-18個(gè)核苷酸處;同樣的,novel-miR2調(diào)控comp145093,切割位點(diǎn)也有兩處,分別為第10-11,12-13個(gè)核苷酸處。5’-RLM-RACE的實(shí)驗(yàn)驗(yàn)證了這些降解組分析的結(jié)果,另外一些切割位點(diǎn)有待進(jìn)一步的驗(yàn)證。 7.茶葉中miRNA的表達(dá)模式分析 對(duì)茶樹1005葉片兒茶素含量的研究發(fā)現(xiàn),兒茶素在不同葉片中的的含量由高到低排序?yàn)椋旱谝蝗~,芽,第二葉,第三葉,成熟葉。第一葉,第三葉和成熟葉的兒茶素含量有顯著差異。 為了探索茶葉中miRNAs與兒茶素合成相關(guān)性,研究人員采用qRT-PCR的方法分析第一葉、第三葉以及成熟葉中miRNA(read values高于平均值)表達(dá)。通過表達(dá)模式的成簇分析將這些miRNA分成三組。第一組,miRNA表達(dá)模式與兒茶素含量成正相關(guān),分別有novel-miR10, novel-miR13, novel-miR19, csn-miR165a, csn-miR170, csn-miR2593e 和novel-miR12;第二組,miRNA表達(dá)模式與兒茶素含量成負(fù)相關(guān),分別有novel-miR1, novel-miR2, csn-miR160a, csn-miR162a, csn-miR394 和csn-miR396a;第三組,miRNA表達(dá)模式與兒茶素含量沒有顯著相關(guān)性,有csn-miR4380a。 8.調(diào)控兒茶素生物合成基因miRNA的鑒定 為了深入了解miRNA在調(diào)控兒茶素合成代謝中的功能,研究人員將高通量測序獲得的miRNA跟NCBI數(shù)據(jù)庫以及RNA測序的兒茶素生物合成相關(guān)基因的mRNA進(jìn)行BLAST,預(yù)測可能的miRNA。為了消除假陽性,對(duì)預(yù)測的斷裂位點(diǎn)進(jìn)行實(shí)驗(yàn)驗(yàn)證。通過5’-RLM-RACE實(shí)驗(yàn)驗(yàn)證了6個(gè)可能參與兒茶素生物合成功能基因表達(dá)調(diào)控的miRNA。它們分別是csn-miRNA167a、f...

分子生物學(xué)的中心法則中,遺傳信息從DNA傳遞給RNA再流向蛋白質(zhì),此過程中RNA不僅發(fā)揮遺傳信息傳遞的作用,還負(fù)責(zé)調(diào)控各種生物學(xué)過程。早在40年前研究者就發(fā)現(xiàn)mRNA存在類似于基因組DNA和組蛋白上可逆的表觀遺傳修飾(其中N6-methyladenosine m6A是最常見的一種轉(zhuǎn)錄后修飾,介導(dǎo)了超過80%的RNA堿基甲基化),但當(dāng)時(shí)并不清楚RNA這種修飾的具體功能,隨著近期研究的深入逐漸揭開了mRNA甲基化的神秘面紗,它可以參與調(diào)控基因表達(dá),并進(jìn)一步調(diào)節(jié)細(xì)胞的分化和發(fā)育。對(duì)mRNA甲基化相關(guān)的轉(zhuǎn)錄組測序數(shù)據(jù)的分析當(dāng)然離不開便捷、可靠的數(shù)據(jù)深度挖掘工具啦!近期百邁客云平臺(tái)Blast小工具助力孫青原老師關(guān)于m6A參與調(diào)節(jié)爪蟾卵母細(xì)胞減數(shù)分裂成熟和胚胎發(fā)育的文章發(fā)表于“Journal of biological chemistry”雜志。接下來,小編跟大家分享這篇文章。 N6-methyladenosine seqencing highlights the involvement of mRNA methylation in oocyte meiotic maturation and embryo development by regulating translation in Xenopus laevis N6-甲基腺苷測序揭示mRNA甲基化通過調(diào)節(jié)非洲爪蟾的翻譯水平參與卵母細(xì)胞減數(shù)分裂成熟和胚胎發(fā)育 PMID: 27613873 雜志:Journal of biological chemistry (JBC) 影響因子:4.12 研究背景在動(dòng)物(如爪蟾、小鼠)的卵子發(fā)生過程中,生殖泡(GV)期卵母細(xì)胞達(dá)到最大體積,同時(shí)基因組轉(zhuǎn)錄活動(dòng)被沉默。成熟的GV期卵母細(xì)胞重新開始分裂、發(fā)育到第二次減數(shù)分裂中期(MII期)后卵母細(xì)胞與精子結(jié)合形成受精卵,受精卵開始分裂起始胚胎發(fā)育,直到中囊胚期全基因組轉(zhuǎn)錄活性恢復(fù)。因此,卵母細(xì)胞生長過程中積累的母源mRNAs的翻譯應(yīng)得到精確的調(diào)控。近期的研究證據(jù)揭示修飾(m6A)參與調(diào)解mRNA翻譯,且m6A修飾在mRNA的不同區(qū)域會(huì)產(chǎn)生不同的翻譯修飾效應(yīng)。目前,m6A修飾是否參與非洲爪蟾卵母細(xì)胞翻譯調(diào)控,及其在卵母細(xì)胞成熟和胚胎發(fā)育中的扮演的角色還不清楚。 材料方法1.實(shí)驗(yàn)材料: GV期和MII期爪蟾卵母細(xì)胞。 2.測序方法: 提取GV期和MII期爪蟾卵母細(xì)胞總RNA后分別進(jìn)行m6A-seq測序。 技術(shù)路線實(shí)驗(yàn)結(jié)果1. GV期和MII期爪蟾卵母細(xì)胞的m6A-seq對(duì)GV期和MII期爪蟾卵母細(xì)胞的m6A修飾mRNAs進(jìn)行分離和測序分析后與X. laevis轉(zhuǎn)錄組比對(duì),鑒定了4207條甲基化修飾的mRNAs(GV期4128條;MII期3820條)。根據(jù)m6A峰的高度,作者把這些mRNAs分為三類:高m6A mRNAs、中m6A mRNAs和低m6A mRNAs。通過這些結(jié)果發(fā)現(xiàn)從GV期到MII期有1674個(gè)mRNAs保持甲基化修飾水平,此外有2400條mRNAs的m6A水平下降、133條mRNAs的m6A水平升高(Figure 1A)。 利用m6A峰值對(duì)應(yīng)序列,作者預(yù)測了爪蟾中保守的m6A基序。與人和小鼠中相似,爪蟾中mRNA甲基化也發(fā)生在GGACU基序(Figure 1B)。研究還發(fā)現(xiàn)m6A峰主要分布在編碼DNA序列(CDS)的下游位置的CDS末端位點(diǎn)附近(Figure 1C)。 ?Figure 1. Summary of the m6A modified mRNAs...

植物抗旱研究的老師看過來了,近期華中農(nóng)業(yè)大學(xué)水稻研究團(tuán)隊(duì)成功構(gòu)建水稻雙基因轉(zhuǎn)化抗旱株,并借助百邁客云計(jì)算平臺(tái)(www.dustyhill.net)挖掘該抗旱株轉(zhuǎn)錄組測序數(shù)據(jù),完成對(duì)該新型水稻抗旱株抗旱機(jī)制初步探究。 中文題目:OsbZIP46、SAPK6基因共同過表達(dá)提升水稻抗旱能力 IF = 4.298 ? ? ? ? ? ? ? ? ?PMID:28694815   研究背景干旱是全世界范圍內(nèi)威脅水稻產(chǎn)量的主要非生物脅迫之一。作物的抗旱性狀一般認(rèn)為由多基因控制,因此,抗旱相關(guān)多基因轉(zhuǎn)化策略理論上可以作為提高水稻抗旱性的一種有效手段。 脫落酸(abscisic acid,ABA)信號(hào)通路在植物非生物脅迫響應(yīng)網(wǎng)絡(luò)中處于中心位置,該通路包含4個(gè)主要組件:a)ABA 受體PYR/PYL/PCAR,b)A型蛋白磷酸酶2C,c)蛋白激酶SnPK2,d)bZIP轉(zhuǎn)錄因子家族(第3亞家族)。之前研究表明,bZIP轉(zhuǎn)錄因子活性在多種植物中可被蛋白磷酸酶SnPK2s通過磷酸化調(diào)節(jié)。我們之前的研究也表明,bZIP轉(zhuǎn)錄因子OsbZIP23和OsbZIP46在水稻抗旱過程中扮演著重要角色,且其轉(zhuǎn)錄調(diào)控活性可被SnPKs家族SAPK2與SAPK6激活。因此,bZIP轉(zhuǎn)錄因子家族與SAPKS蛋白磷酸酶家族可作為多基因轉(zhuǎn)化策略中的候選基因來提升水稻抗旱能力。 技術(shù)路線 材料與方法材料 轉(zhuǎn)化基因:OsbZIP46CA1(bZIP轉(zhuǎn)錄因子OsbZIP46刪除負(fù)調(diào)控domainD)+ SAPK6(蛋白磷酸酶家族); 轉(zhuǎn)化載體:pCB2004質(zhì)粒 水稻轉(zhuǎn)化受體材料 : 東北種植品質(zhì)KY131 水稻轉(zhuǎn)基因材料:XL22(OsbZIP46CA1+SAPK6),CA1-OE(OsbZIP46CA1),SAPK6-OE(SAPK6) RNA-seq材料:XL22、CA1-OE、SAPK6-OE、KY-131-N4葉齡種子材料,每個(gè)處理3個(gè)生物學(xué)重復(fù) 方法 轉(zhuǎn)化:農(nóng)桿菌介導(dǎo)轉(zhuǎn)化 插入片段拷貝數(shù)檢測:Southern Blot 插入基因轉(zhuǎn)錄水平評(píng)估:熒光定量PCR 插入基因蛋白表達(dá)及活性評(píng)估:熒光定量PCR檢測OsbZIP46CA1調(diào)控基因Rab21、 Rab16B在轉(zhuǎn)基因材料中的轉(zhuǎn)錄水平;轉(zhuǎn)基因材料對(duì)ABA敏感性判斷轉(zhuǎn)化基因是否正常過蛋白過表達(dá)且產(chǎn)生活性 抗旱性評(píng)估: 種子發(fā)育期,缺水處理7天,恢復(fù)給水7天后存活率;生殖生長期,孕穗期缺水處理14天,產(chǎn)量、灌漿速率、穗數(shù)、小穗花數(shù)等指標(biāo) RNA-seq測序:Hiseq測序平臺(tái),百邁客云(www.dustyhill.net)數(shù)據(jù)分析平臺(tái) 結(jié)果1、轉(zhuǎn)化株構(gòu)建與篩選 1)使用MISSA系統(tǒng)構(gòu)建pCB2004+OsbZIP46CA1+SAPK6重組質(zhì)粒,采用農(nóng)桿菌介導(dǎo)轉(zhuǎn)化方法將兩個(gè)抗旱相關(guān)目標(biāo)基因插入東北栽培品種水稻KY131基因中,構(gòu)建OsbZIP46CA1、APK6雙基因轉(zhuǎn)化株。另外,也使用同樣的轉(zhuǎn)化體系分別構(gòu)建了上述兩個(gè)基因的單基因轉(zhuǎn)化株。 2)通過southern-blot雜交技術(shù),鑒定T0初始轉(zhuǎn)化株中插入基因的拷貝數(shù),挑選插入基因單拷貝的T0的T1子代初步鑒定具備抗旱性狀的轉(zhuǎn)基因株(肉眼觀察)。 3)最終篩選得到一個(gè)在生殖器官發(fā)育階段抗旱強(qiáng)于非轉(zhuǎn)基因株的雙基因轉(zhuǎn)化株XL22,見圖1B。 4)利用熒光定量PCR技術(shù),檢查了XL22轉(zhuǎn)基因株及其對(duì)應(yīng)的單基因轉(zhuǎn)化株中的插入基因是否過表達(dá),如圖1C所示,上述轉(zhuǎn)化株中插入基因均出現(xiàn)了預(yù)期的轉(zhuǎn)錄水平。 5)以O(shè)sbZIP46CA1的下游調(diào)控基因Rab21、Rab16B的轉(zhuǎn)錄水平,轉(zhuǎn)化株對(duì)ABA的敏感性來判斷插入基因是否發(fā)揮作用,如圖1C所示,轉(zhuǎn)化株中點(diǎn)的Rab21、 Rab16B轉(zhuǎn)錄水平均出現(xiàn)上調(diào),且轉(zhuǎn)化株對(duì)ABA更加敏感,說明上述轉(zhuǎn)化株中的插入基因均能正常發(fā)揮作用。 2、XL22轉(zhuǎn)化株抗旱能力評(píng)估 a)生殖生長期抗旱能力評(píng)估:XL22、CA1-OE(OsbZIP46CA1轉(zhuǎn)化株)、SAPK6-OE(SAPK6轉(zhuǎn)化株)、KY-131-N(非轉(zhuǎn)基因株)4組材料,每組4個(gè)獨(dú)立生物學(xué)重復(fù),孕穗期缺水處理14天,比較不同材料之間的單株產(chǎn)量、灌漿速率、穗數(shù)、小穗花數(shù)、圓錐花序數(shù)、單位面積產(chǎn)量6個(gè)指標(biāo)。如圖3所示,無論是肉眼觀察(3A、3B)結(jié)果,還是上述6個(gè)指標(biāo)(3C)統(tǒng)計(jì)結(jié)果,都表明XL22在抗旱性上要優(yōu)于單基因轉(zhuǎn)化株與非轉(zhuǎn)基因株。 b)種子發(fā)育期抗旱能力評(píng)估:XL22、CA1-OE(OsbZIP46CA1轉(zhuǎn)化株)、SAPK6-OE(SAPK6轉(zhuǎn)化株)3組材料(4葉齡),每組3個(gè)生物學(xué)重復(fù),7天缺水處理,觀察恢復(fù)給水7天后的葉片卷曲情況,統(tǒng)計(jì)存活率。如圖4A所所示,恢復(fù)給水7天后,XL22相較于單基因轉(zhuǎn)化株,葉卷曲更加輕微,如圖B所示,XL22的存活率也要顯著高于單基因轉(zhuǎn)化株。另外,如圖4所示,XL22離體葉片子在室內(nèi)環(huán)境下,脫水速度也顯著低于其他材料。該結(jié)果表明,XL22在種子發(fā)育階段的抗旱能力也要強(qiáng)于單基因轉(zhuǎn)化株。 3、XL22轉(zhuǎn)化株耐熱、抗寒能力評(píng)估 分別取XL22、CA1-OE、SAPK6-OE、KY-131-N的4葉齡種子材料,每個(gè)3個(gè)生物學(xué)重復(fù),均進(jìn)行42℃ 12小時(shí),4℃5天處理,最后正常環(huán)境下生長7天,觀察這各材料之間的葉卷曲清苦以及存活率,結(jié)果顯示,XL22表現(xiàn)為個(gè)更高的存活率(圖5C),更加輕微的葉片卷曲(圖4A),表明XL22相較于單基因轉(zhuǎn)化株與非轉(zhuǎn)基因株擁有更強(qiáng)的耐熱、抗寒能力。 4、RNA-seq揭示XL22抗旱分子學(xué)機(jī)制 a)為了分析XL22抗旱表型后的基因調(diào)控網(wǎng)絡(luò),研究者分別對(duì)XL22、 CA1-OE、SAPK6-OE 3個(gè)轉(zhuǎn)化株系在正常給水與相同缺水處理?xiàng)l件下的材料進(jìn)行了轉(zhuǎn)錄組測序,取樣部位為倒二葉,每個(gè)處理設(shè)置兩個(gè)生物重復(fù),測序使用illumina Hiseq平臺(tái),PE150讀取方式,數(shù)據(jù)分析在百邁客云計(jì)算平臺(tái)(www.dustyhill.net)完成。 b)分析結(jié)果顯示,XL22的缺水處理相較于正常給水組材料,2977個(gè)基因轉(zhuǎn)錄水平顯著上調(diào),3243個(gè)顯著下調(diào);CA1-OE中,2962個(gè)基因轉(zhuǎn)錄上調(diào), 3514個(gè)基因轉(zhuǎn)錄下調(diào);SAPK6-OE中,3433個(gè)基因轉(zhuǎn)錄上調(diào),3472個(gè)基因轉(zhuǎn)錄下調(diào)(FDR < 0.01, |FC| > 2)。大部分的轉(zhuǎn)錄上調(diào)基因在3個(gè)材料之間是共有的,如圖6B所示,表明這些上調(diào)基因在水稻干旱脅迫響應(yīng)中功能比較保守。 c)由于轉(zhuǎn)基因材料中過表達(dá)基因?yàn)閎ZIP家族轉(zhuǎn)錄因子及其活性激活基因家族,研究者重點(diǎn)關(guān)注了3個(gè)材料中轉(zhuǎn)錄上調(diào)的基因,這些基因被劃分為4類:Group1,XL22相較于CA1-OE特有上調(diào)基因,645個(gè);Group2,XL22相較于SAPK6-OE特有上調(diào)基因,500個(gè)基因特異上調(diào);Group3,CA1-OE相較于SAPK6-OE特有上調(diào)基因,398個(gè);Group4,SAPK6-OE相較于CA1-OE特有上調(diào)基因,869個(gè)。Group I主要分布在“Response to ABA”、“Regulation of Plant-type Hypersensitive response”等GO term;Group II主要分布在“Organic Substance Biosynthetic Process” 、“Salicylic Acid...

百邁客微生物多樣性分析平臺(tái)(微云),基于百邁客云開發(fā)的微生物多樣性在線數(shù)據(jù)分析平臺(tái),操作簡單、運(yùn)行快速、分析豐富,平均8h完成分析,24h后臺(tái)運(yùn)行跟進(jìn)、2h內(nèi)問題應(yīng)答、一天搞定微生物多樣性信息分析! 雙重好禮相送,分別掃碼即可獲贈(zèng) 第一重好禮---多樣性分析平臺(tái)免費(fèi)送 掃描下方二維碼即可獲得10天微生物多樣性云分析平臺(tái)免費(fèi)使用 第二重好禮---多樣性在線培訓(xùn)免費(fèi)送 掃描二維碼即可加入百邁客微云交流平臺(tái)(QQ群:439540040)參加免費(fèi)培訓(xùn) ...

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